41
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
Toxicidad de los aceites esenciales de Bursera
graveolens, Lepechinia meyenii y Myrtus
communis sobre Chrysoperla asoralis,
Chrysoperla externa y Ceraeochrysa cincta
(Neuroptera: Chrysopidae)
rEsumEn
El uso excesivo de agroquímicos puede ocasionar contaminación
ambiental y desarrollo de plagas resistentes. Por este motivo, se
utilizan a las plantas biocidas como una alternativa para el control
integrado de plagas. Aquí evaluamos la toxicidad de los aceites
esenciales de Bursera graveolens (Burseraceae), Lepechinia meyenii
(Lamiaceae) y Myrtus communis (Myrtaceae) sobre los huevos y
larvas del primer instar de Chrysoperla externa, Chrysoperla asoralis
y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae) bajo condiciones
de laboratorio. Se emplearon diluciones con alcohol etílico al
70% de B. graveolens y L. meyenii al 20%, 10% y 5%; y con
Dimetilsulfóxido (DMSO) de M. communis al 2%, 1%, 0,5%,
0,25% y 0,125%, en un período de ~120 h para la eclosión de
huevos, y de 24 h y 48 h de exposición para evaluar toxicidad
por contacto residual. Se calcularon los parámetros de toxicidad
de LOEC (Concentración más baja con efecto observado), NOEC
(Concentración sin efecto observado) y CL
50
(Concentración
Letal media). Los aceites
esenciales de B. graveolens, L. meyenii y
M. communis presentaron efecto sobre la eclosión de los huevos
de los tres crisópidos. B. graveolens y L. meyenii presentan poco o
nulo efecto sobre las larvas de los neurópteros estudiados; mientras
que el aceite esencial de M. communis, sí presentó efecto larvicida.
Los aceites esenciales pueden ser usados en el manejo integrado de
plagas.
Palabras clave: aceite esencial, bioensayos, Chrysopidae,
plaguicidas botánicos, toxicidad
aBstraC t
Excessive use of agrochemicals can cause environmental pollution
and development of resistant pests. For this reason, biocidal plants
are used as an alternative for integrated pest control. e toxicity
of the essential oils of Bursera graveolens (Burseraceae), Lepechinia
meyenii (Lamiaceae) and Myrtus communis (Myrtaceae) on the
H P
J I
,
L A
M C
1 Universidad Nacional Federico
Villarreal (UNFV), Escuela
Universitaria de Postgrado. Grupo
de Investigación Sostenibilidad
Ambiental (GISA). Facultad de
Ciencias Naturales y Matemática
(FCCNM), Laboratorio de
Ecología y Biodiversidad Animal
(LEBA), Lima, Perú.
2 Universidad Ricardo Palma.
Facultad de Ciencias Biológicas.
Lima, Perú.
3 Universidad Nacional Mayor de
San Marcos (UNMSM), Facultad
de Farmacia y Bioquímica (FFB),
Lima, Perú.
* Autor para correspondencia E-mail:
joseiannacone@gmail.com
Toxicity of the essential oils of Bursera graveolens, Lepechinia meyenii
and Myrtus communis against Chrysoperla asoralis, Chrysoperla externa
and Ceraeochrysa cincta
Recibido: noviembre 20 de 2019 | Revisado: diciembre 15 de 2019 | Aceptado: enero 14 de 2020
https://doi.org/10.24265/campus.2020.v25n29.03
| C | V. XX IV | N. 28 | PP. - | - | || C | V. XX IV | N. 28 | PP. - | - | || C | V. XX V | N. 29 | PP. - | - | |
© Los autores. Este artículo es publicado por la Revista Campus de la Facultad de Ingeniería y Arquitectura de la Universidad
de San Martín de Porres. Este artículo se distribuye en los términos de la Licencia Creative Commons Atribución No-comercial
– Compartir-Igual 4.0 Internacional (https://creativecommons.org/licenses/ CC-BY), que permite el uso no comercial,
distribución y reproducción en cualquier medio siempre que la obra original sea debidamente citada. Para uso comercial
contactar a: revistacampus@usmp.pe.
42
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
eggs and larvae of the rst instar of Chrysoperla externa, Chrysoperla
asoralis and Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae) was
evaluated under conditions from laboratory. Dilutions with 70% ethyl
alcohol of B. graveolens and 20% L. meyenii, 10% and 5% were used;
and with Dimethyl sulfoxide (DMSO) of M. communis at 2%, 1%,
0.5%, 0.25% and 0.125%, in a period of ~ 120 h for egg hatching,
and 24 h and 48 h of exposure to assess residual contact toxicity. e
toxicity parameters of LOEC (lowest concentration with observed
eect), NOEC
(concentration without observed eect) and LC
50
(mean lethal concentration) were
calculated. e essential oils of B.
graveolens, L. meyenii and M. communis had an eect on the hatching
of the eggs of the three chrysopids. B. graveolens and L. meyenii have
little or no eect on the larvae of the studied neuroptera; while the
essential oil of M. communis did show larvicidal eect. Essential oils
can be used in integrated pest management.
Key words: botanical pesticides, bioassays, Chrysopidae, essential oil,
toxicity
Introducción
La aplicación de agroquímicos es
una de las herramientas más empleadas
actualmente para el control de plagas
agrícolas, pero, su uso excesivo puede
producir contaminación ambiental y
desarrollo de plagas resistentes (Sarwar,
2015; Campos et al., 2016) por lo
que existe una necesidad urgente de
desarrollar alternativas seguras que tengan
el potencial de reemplazar los fumigantes
tóxicos, pero que sean efectivas,
económicas y convenientes de usar
(Ayvaz et al., 2008). Por estas razones, los
productos derivados de las plantas, como
los aceites esenciales, son una fuente de
nuevas alternativas con potencial para el
control de plagas agrícolas (Souza et al.,
2008), debido a su menor toxicidad en el
ambiente con relación a los insecticidas
sintéticos, efectividad como plaguicida
(Cruz et al., 2014) y, además, provienen
de fuentes renovables (Tarqui, 2007).
Bursera graveolens (Kunth) Triana &
Palnch, 1872 (Burseraceae), “palo santo”
es una planta nativa que crece en bosques
secos de la costa pacíca de Sudamérica en
gran parte de América. Ha sido utilizada
desde épocas remotas como remedio para
dolores estomacales, sudorícos y como
linimento para reumatismos y fuertes
ebres. El aceite esencial de la corteza
de B. graveolens presentan actividad
fungicida contra hongos topatógenos
como Botrytis cinerea y Fusarium
oxysporum. También es usado para tratar
(tópicamente) la fatiga, jaqueca, mareos y
taquicardia (UICN, 2019).
Lepechinia meyenii Epling, 1935
(Lamiaceae), “pacha salvia” es una
planta nativa de los Andes occidentales,
distribuida en Argentina, Bolivia y
Perú, entre los 1500 y 4500 msnm.
Como infusión se utiliza para combatir
bronquitis, problemas del corazón, de
nervios. Combinado con Rosmarinus
ocinalis y Plantago linearis, se utiliza
para curar heridas y pérdida del cabello
(Bussmann & Sharon, 2015). En el
Callejón de Huaylas y en la Región de
los Libertadores Wari, los pobladores
la usan como infusión de planta entera
sola o combinada con culén y orégano
blanco para el tratamiento de diarreas,
cólicos, afecciones hepáticas y como
H P - J I - L A - C
43
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
aperitivo (Rossi et al., 2002). Además,
presenta sustancias antioxidantes
(Castillo, 2004).
Myrtus communis Linneo, 1753
(Myrtaceae), “arrayán” o “mirto” es una
planta nativa del sur de Europa, también
se encuentra en Ecuador, Colombia,
Costa Rica, Panamá, Perú y Venezuela
(Guzmán, 2005). Sus propiedades
aromáticas se deben a los principios
activos, componentes descubiertos en
sus hojas (Gardeli et al., 2008), donde
aceites esenciales, taninos, triterpenos
y algunos tipos de glucósidos como
los avonoides han sido encontrados
en cantidades importantes (Satrani et
al., 2006), componentes que a su vez,
le otorgan propiedades antisépticas y
antimicrobianas en especial para bacterias
gran positivas, convirtiendo al arrayán
como un elemento adecuado en el control
de problemas respiratorios, disentería,
estomatitis, faringitis, psoriasis, herpes
(Berka-Zougali et al., 2012). Se ha
registrado la toxicidad del aceite esencial
de M. communis sobre diferentes insectos
plaga como larvas y adultos de Trogoderma
granarium (Tayoub et al., 2012), adultos
de Tribolium confusum y Callosobuchus
aculatus (Khani & Basavand, 2012),
Tetranychus urticae (Motazedian et al.,
2012), mostrando efectividad como
insecticida.
Chrysoperla externa Hagen, 1861
(Chrysopidae), “león de ádos” destaca
como controlador biológico por su
gran voracidad en estado larval, amplia
distribución, presencia de adultos todo el
año, fácil crianza en cautiverio, potencial
para adaptarse a varios ambientes de
cultivo y su resistencia a numerosos
plaguicidas (Silva et al., 2012; Moura et
al., 2012), así como a productos botánicos
(Iannacone & Lamas, 2002; Medina et
al., 2004; Iannacone et al., 2015; Alegre
et al., 2017ab) y se le ha registrado
depredando un amplio rango de insectos
de cuerpo blando, especialmente huevos
y larvas de lepidópteros. Está considerada
en programas de Manejo Integrado de
Plagas (MIP) del Programa Nacional de
Control Biológico (PNCB), se producen
masivamente en los laboratorios de control
biológico del Perú, para su distribución
y sostenimiento de programas de MIP
(Nuñez, 1988).
Chrysoperla asoralis Banks, 1915
(Chrysopidae), es una especie
depredadora perteneciente de la región
Neotropical en donde ha sido utilizada
con mucho éxito para el control de
plagas en hortalizas, como los espárragos
(Gonzáles & Reguillón, 2002) y frutales
tanto en campo abierto como en
invernadero. Las condiciones climáticas
del Perú, especialmente la costa (donde
hay ausencia de lluvias y temperaturas
favorables para las crisopas durante todo
el año), provocan el gran éxito de este
depredador.
Ceraeochrysa cincta Schneider, 1851
(Chrysopidae), está ampliamente
distribuida desde Florida, Estados Unidos
de América (EUA), hasta Argentina,
incluyendo las Islas Galápagos en
América del Sur (Ramírez et al., 2007).
Por la gran distribución y asociación con
diversos artrópodos plaga en diferentes
sistemas agrícolas, se considera que esta
especie presenta un gran potencial como
agente de control biológico (Iannacone
& Alvariño, 2010).
El conocer los efectos de los insecticidas
botánicos sobre los controladores
biológicos ayudarían a comprobar su
Toxicidad de los aceites esenciales de Bursera graveolens, Lepechinia meyenii y Myrtus
communis sobre
Chrysoperla asoralis, Chrysoperla externa y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae)
44
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
compatibilidad para su posible uso en el
MIP (Iannacone et al., 2015; Parolín et
al., 2015; Alegre et al., 2017a). El objetivo
de este trabajo es evaluar la toxicidad de
los aceites esenciales de B. graveolens, L.
meyenii y M. communis sobre C. asoralis,
C. externa y C. cincta, bajo condiciones
de laboratorio.
Método
Los bioensayos se realizaron en el
Laboratorio de Ecología y Biodiversidad
Animal (LEBA) de la Facultad de Ciencias
Naturales y Matemática de la Universidad
Nacional Federico Villarreal (UNFV), El
Agustino, Lima, Perú, durante el 2019.
Aceites esenciales
Los aceites esenciales de B. graveolens
y L. meyenii al 70%, y de M. communis
al 100% se extrajeron por arrastre de
vapor de agua. Estos aceites fueron
adquiridos del Centro de Investigación
de Plantas Medicinales Aromáticas y
Medicina Tradicional (CIPLAMT).
Se realizaron diluciones con alcohol
al 70% de los aceites de B. graveolens
y L. meyenii al 20%, 10% y 5%; y con
Dimetilsulfóxido (DMSO) del aceite de
M. communis al 2%, 1%, 0.5%, 0.25%
y 0.125% (Barrueta et al., 2017; Sariol
et al., 2019). Finalmente, las diluciones
se almacenaron en frascos de color ámbar
para su uso en los bioensayos.
Insectos
Se adquirieron huevecillos maduros
de C. externa, C. asoralis y de C. cincta
del Programa Nacional de Control
Biológico, Servicio Nacional de Sanidad
Agraria (PN-CB- SENASA), Lima, Perú,
los cuales se separaron para ensayos de
inmersión y para los ensayos de contacto
residual. Estos últimos se acondicionaron
en recipientes de plástico hasta el
momento de su eclosión. Las larvas del
primer instar recién emergidas fueron
alimentadas con huevos de Sitotroga
cerealella (Olivier, 1789) antes de
utilizarlos en los bioensayos (Iannacone
& Alvariño, 2010).
Bioensayos
Los bioensayos por inmersión
se llevaron a cabo sumergiendo los
huevecillos de los neurópteros durante
cinco segundos en las diluciones de
los aceites. Posteriormente, los huevos
fueron colocados en papel tissue por
10 min para absorber los restos de
soluciones acuosas y permitir el secado
a temperatura ambiente (Alegre et al.,
2017b). Se trataron 10 huevos por
cada concentración. Los huevos fueron
individualizados en envases de plástico
de 12 mL de capacidad. Después de
las aplicaciones tópicas, los envases de
plástico se mantuvieron en oscuridad
bajo condiciones de cría, realizándose las
lecturas hasta la eclosión de los huevos
(~120 h).
Los bioensayos por contacto residual
se llevaron a cabo en envases de plástico
de 12 mL de capacidad, a los cuales se
les hizo pequeños oricios en la tapa
para permitir su respiración (Iannacone
et al., 2015; Celaya et al., 2019;
Valdiviezo, 2019). Se pasó un hisopo
estéril previamente sumergido por 30
seg una sola vez en cada extracto vegetal,
para luego esparcirlo homogéneamente
por todas las paredes de cada recipiente
plástico. Luego, los envases se secaron a
temperatura ambiente por un intervalo de
2 h (Iannacone & Alvariño, 2010). Diez
H P - J I - L A - C
45
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
larvas del primer instar de los neurópteros
se colocaron individualmente en cada
recipiente plástico (Alegre et al., 2017b),
debido a que estos insectos presentan
hábitos de canibalismo cuando escasea el
alimento (Núñez, 1988). Los bioensayos
se realizaron en condiciones de oscuridad
para evitar la fotólisis de los extractos
botánicos (Iannacone & Lamas, 2003;
Iannacone & Alvariño, 2005). Las
lecturas de mortalidad fueron a las 24 h
y 48 h. Se evidenció la muerte cuando
la larva no realice algún movimiento
corporal coordinado al ser estimulado
con un aller entomológico durante 15
seg en su observación en el microscopio
estereoscópico (Iannacone & Alvariño,
2005).
Diseño experimental y análisis de
datos
Se usaron tres concentraciones
(20%, 10% y 5%) del aceite esencial
de B. graveolens y L. meyenii y cinco
concentraciones (2%, 1%, 0,5%, 0,25%
y 0,125%) de M. communis, cada uno con
cuatro repeticiones, un control de agua
destilada para los dos primeros aceites y
un control de DMSO para el último. Se
realizó el análisis de varianza (ANOVA) y
la prueba post hoc de Tukey con un nivel de
signicancia de p ≤ 0,05. Se hizo un ajuste
del control a 0% mediante la fórmula de
Schneider-Orelli’s derivada de la fórmula
de Abbot (Fusé et al., 2013). Se calcularon
los valores de LOEC (Concentración
más baja con efecto observado) y NOEC
(Concentración sin efecto observado)
según
Alegre et al. (2017b) para los efectos
de toxicidad de los tres aceites. Se calculó la
CL
50 usando el programa computarizado
Probit versión 1.5 (Weber, 1993) para
los efectos del aceite de M. communis.
Se empleó el paquete estadístico SPSS,
versión 25 para Windows 10 (2018) para
el cálculo de los estadísticos descriptivos e
inferenciales.
Resultados y discusión
Los aceites esenciales de B. graveolens
y L. meyenii presentaron efecto sobre
la eclosión de los huevos de C. externa,
C. asoralis y C. cincta en las tres
concentraciones. Los valores de LOEC
y NOEC fueron de 5 g·100 mL
-1
y
<5 g·100 mL
-1
, respectivamente para
los efectos de los extractos sobre los
tres neurópteros (Tabla 1). El aceite
esencial de M. communis presentó efecto
sobre la eclosión de los huevos de los
tres controladores biológicos siendo C.
asoralis la especie más sensible, seguido
de C. cincta y C. externa (Tabla 2).
El efecto ovicida de estos aceites
puede ocurrir debido a una toxicidad
aguda o a la alteración de procesos
siológicos y químicos del desarrollo
embrionario por la penetración de los
compuestos volátiles de los aceites dentro
de los huevos (Ramírez et al., 2010),
aunque los autores mencionan que los
huevos de algunas especies presentan
mayor tolerancia a agentes químicos en
comparación a otros estados de desarrollo
del insecto (González et al., 2016). Sin
embargo, para asegurar lo que ocasiona
el efecto ovicida por parte de los aceites
utilizados, es recomendable realizar
pruebas complementarias.
Toxicidad de los aceites esenciales de Bursera graveolens, Lepechinia meyenii y Myrtus
communis sobre
Chrysoperla asoralis, Chrysoperla externa y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae)
46
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
Tabla 1
Efecto de Bursera graveolens y Lepechinia meyenii sobre Chrysoperla externa, Chrysoperla asoralis y
Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae) en términos de porcentaje de no eclosión de huevos.
7
Tabla 1
Efecto de Bursera graveolens y Lepechinia meyenii sobre Chrysoperla externa, Chrysoperla
asoralis y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae) en términos de porcentaje de no
eclosión de huevos.
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia significativa
entre los valores por la prueba de Duncan (p≤0,05). NOEC= Concentración sin efecto observado.
LOEC=Concentración mínima con efecto observado. F=Prueba de Fisher. Sig.=Nivel de
significancia.
Tabla 2
Efecto de Myrtus communis sobre Chrysoperla externa, C. asoralis y Ceraeochrysa cincta
en términos de porcentaje de no eclosión de huevos
C. externa
C. asoralis
C. cincta
Myrtus communis
Concentración
Control
0
0a
0a
0,125%
0a
2,86ab
0a
0,25%
7,89ab
25,71abc
5ab
0,5%
10,53ab
37,14c
10ab
1%
18,42ab
31,43bc
15b
2%
26,32b
34,29c
32,5c
NOEC (%)
1
0,25
0,5
LOEC (%)
2
0,5
1
CL
50
(% extracto)
12,15
2,81
5,20
F
3,79
6,53
22,89
Sig
0,01
0,001
0,000
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia significativa
entre los valores por la prueba de Duncan (p≤0,05). NOEC= Concentración sin efecto observado.
LOEC=Concentración mínima con efecto observado. CL
50
= Concentración Letal Media. F=Prueba
de Fisher. Sig.=Nivel de significancia.
C. externa
C. asoralis
C. cincta
Concentración
B. graveolens
L. meyenii
B. graveolens
L. meyenii
B. graveolens
L. meyenii
Control
0a
0a
0a
0a
0a
0a
5%
92,1b
92,3b
86,4b
95b
87,2b
97,5b
10%
97,4b
94,8b
91,8b
100b
97,4b
97,5b
20%
100b
100b
100b
100b
97,4b
100b
NOEC (%)
<5
<5
<5
<5
<5
<5
LOEC (%)
5
5
5
5
5
5
F
225,11
420
108,69
1163
113,22
774
Sig.
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia signicativa
entre los valores por la prueba de Duncan (p≤0,05). NOEC= Concentración sin efecto observado.
LOEC=Concentración mínima con efecto observado. F=Prueba de Fisher. Sig.=Nivel de
signicancia.
Tabla 2
Efecto de Myrtus communis sobre Chrysoperla externa, C. asoralis y Ceraeochrysa cincta en
términos de porcentaje de no eclosión de huevos
7
Tabla 1
Efecto de Bursera graveolens y Lepechinia meyenii sobre Chrysoperla externa, Chrysoperla
asoralis y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae) en términos de porcentaje de no
eclosión de huevos.
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia significativa
entre los valores por la prueba de Duncan (p≤0,05). NOEC= Concentración sin efecto observado.
LOEC=Concentración mínima con efecto observado. F=Prueba de Fisher. Sig.=Nivel de
significancia.
Tabla 2
Efecto de Myrtus communis sobre Chrysoperla externa, C. asoralis y Ceraeochrysa cincta
en términos de porcentaje de no eclosión de huevos
C. externa
C. asoralis
C. cincta
Myrtus communis
Concentración
Control
0
0a
0a
0,125%
0a
2,86ab
0a
0,25%
7,89ab
25,71abc
5ab
0,5%
10,53ab
37,14c
10ab
1%
18,42ab
31,43bc
15b
2%
26,32b
34,29c
32,5c
NOEC (%)
1
0,25
0,5
LOEC (%)
2
0,5
1
CL
50
(% extracto)
12,15
2,81
5,20
F
3,79
6,53
22,89
Sig
0,01
0,001
0,000
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia significativa
entre los valores por la prueba de Duncan (p≤0,05). NOEC= Concentración sin efecto observado.
LOEC=Concentración mínima con efecto observado. CL
50
= Concentración Letal Media. F=Prueba
de Fisher. Sig.=Nivel de significancia.
C. externa
C. asoralis
C. cincta
Concentración
B. graveolens
L. meyenii
B. graveolens
L. meyenii
B. graveolens
L. meyenii
Control
0a
0a
0a
0a
0a
0a
5%
92,1b
92,3b
86,4b
95b
87,2b
97,5b
10%
97,4b
94,8b
91,8b
100b
97,4b
97,5b
20%
100b
100b
100b
100b
97,4b
100b
NOEC (%)
<5
<5
<5
<5
<5
<5
LOEC (%)
5
5
5
5
5
5
F
225,11
420
108,69
1163
113,22
774
Sig.
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
7
Tabla 1
Efecto de Bursera graveolens y Lepechinia meyenii sobre Chrysoperla externa, Chrysoperla
asoralis y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae) en términos de porcentaje de no
eclosión de huevos.
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia significativa
entre los valores por la prueba de Duncan (p≤0,05). NOEC= Concentración sin efecto observado.
LOEC=Concentración mínima con efecto observado. F=Prueba de Fisher. Sig.=Nivel de
significancia.
Tabla 2
Efecto de Myrtus communis sobre Chrysoperla externa, C. asoralis y Ceraeochrysa cincta
en términos de porcentaje de no eclosión de huevos
C. externa
C. asoralis
C. cincta
Myrtus communis
Concentración
Control
0
0a
0a
0,125%
0a
2,86ab
0a
0,25%
7,89ab
25,71abc
5ab
0,5%
10,53ab
37,14c
10ab
1%
18,42ab
31,43bc
15b
2%
26,32b
34,29c
32,5c
NOEC (%)
1
0,25
0,5
LOEC (%)
2
0,5
1
CL
50
(% extracto)
12,15
2,81
5,20
F
3,79
6,53
22,89
Sig
0,01
0,001
0,000
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia significativa
entre los valores por la prueba de Duncan (p≤0,05). NOEC= Concentración sin efecto observado.
LOEC=Concentración mínima con efecto observado. CL
50
= Concentración Letal Media. F=Prueba
de Fisher. Sig.=Nivel de significancia.
C. externa
C. asoralis
C. cincta
Concentración
B. graveolens
L. meyenii
B. graveolens
L. meyenii
B. graveolens
L. meyenii
Control
0a
0a
0a
0a
0a
0a
5%
92,1b
92,3b
86,4b
95b
87,2b
97,5b
10%
97,4b
94,8b
91,8b
100b
97,4b
97,5b
20%
100b
100b
100b
100b
97,4b
100b
NOEC (%)
<5
<5
<5
<5
<5
<5
LOEC (%)
5
5
5
5
5
5
F
225,11
420
108,69
1163
113,22
774
Sig.
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
0,00
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia signicativa
entre los valores por la prueba de Duncan (p≤0,05). NOEC= Concentración sin efecto
observado.
LOEC=Concentración mínima con efecto observado. CL
50
= Concentración Letal
Media. F=Prueba
de Fisher. Sig.=Nivel de signicancia.
El aceite esencial de B. graveolens no
presentó efecto insecticida sobre las
larvas del primer estadio de C. externa y
C. asoralis a las 24 h y 48 h de exposición,
de igual manera, el aceite de L. meyenii
tampoco presenta efecto insecticida sobre
H P - J I - L A - C
47
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
C. asoralis, pues los resultados obtenidos
no dirieron signicativamente del
control (p≤0,005). Sin embargo, el
extracto de L. meyenii sí presentó efecto
larvicida sobre C. externa a las 48 h de
exposición (Tabla 3).
Tabla 3
Efecto de Bursera graveolens y Lepechinia meyenii sobre Chrysoperla externa y Chrysoperla asoralis
(Neuroptera: Chrysopidae) en términos de porcentaje de mortalidad larvaria del primer estadio a 24
h y 48 h de exposición.
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia
signicativa entre los valores por la prueba de Duncan (p≤0.05). NOEC= Concentración sin
efecto observado. LOEC=Concentración mínima con efecto observado. F=Prueba de Fisher.
Sig.=Nivel de signicancia.
8
El aceite esencial de B. graveolens no presentó efecto insecticida sobre las larvas del
primer estadio de C. externa y C. asoralis a las 24 h y 48 h de exposición, de igual manera,
el aceite de L. meyenii tampoco presenta efecto insecticida sobre C. asoralis, pues los
resultados obtenidos no difirieron significativamente del control (p≤0,005). Sin embargo,
el extracto de L. meyenii sí presentó efecto larvicida sobre C. externa a las 48 h de
exposición (Tabla 3).
Tabla 3
Efecto de Bursera graveolens y Lepechinia meyenii sobre Chrysoperla externa y
Chrysoperla asoralis (Neuroptera: Chrysopidae) en términos de porcentaje de mortalidad
larvaria del primer estadio a 24 h y 48 h de exposición.
Chrysoperla externa
Chrysoperla asoralis
B. graveolens
L. meyenii
B. graveolens
L. meyenii
Exposición
Concentración
24h
48h
24h
48h
24h
48h
24h
48h
Control
0a
0a
0a
0a
0a
0a
0a
0a
5%
0a
0a
0a
0a
0a
0a
0a
2,5a
10%
0a
2,5a
2,5a
7,5ab
0a
0a
2,5a
7,5a
20%
0a
2,5a
5a
12,5b
0a
2,5a
0a
7,5a
NOEC (%)
20
20
20
10
20
20
20
20
LOEC (%)
>20
>20
>20
20
>20
>20
>20
>20
F
0
0,66
1,57
5.14
0
1
1
1,08
Sig.
0
0,58
0,24
0,01
0
0,42
0,42
0,39
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia significativa entre los valores por la prueba de
Duncan (p≤0.05). NOEC= Concentración sin efecto observado. LOEC=Concentración mínima con efecto observado. F=Prueba de
Fisher. Sig.=Nivel de significancia.
El efecto del aceite esencial de L. meyenii sobre los crisópidos en este trabajo puede
deberse a su composición química que presenta α-pineno (21,37%) y eucaliptol (18,80%)
como componentes mayoritarios (Quispe & Tenorio, 2018). Ruiz et al. (2015) también
registraron a α-Pineno (29,87%) y Eucaliptol (13,25%) como componentes mayoritarios.
Los pinenos han demostrado tener acción ovicida, larvicida y repelente en mosquitos como
Aedes aegypti, Culex quinquefasciatus y Anopheles stephensi (Leyva et al., 2009); así
mismo, el eucaliptol (1,8-cineol) es un monoterpeno encontrado también en Lavandula
spica (Lamiaceae), que presenta actividad insecticida frente Ceratitis capitata “Mosca
mediterránea de la fruta” (Clemente et al., 2007) o Trialeurodes vaporariorum “Mosca
blanca” (Choi et al., 2003; García et al., 2014).
El efecto del aceite esencial de L.
meyenii sobre los crisópidos en este
trabajo puede deberse a su composición
química que presenta α-pineno
(21,37%) y eucaliptol (18,80%) como
componentes mayoritarios (Quispe
& Tenorio, 2018). Ruiz et al. (2015)
también registraron a α-Pineno
(29,87%) y Eucaliptol (13,25%) como
componentes mayoritarios. Los pinenos
han demostrado tener acción ovicida,
larvicida y repelente en mosquitos como
Aedes aegypti, Culex quinquefasciatus y
Anopheles stephensi (Leyva et al., 2009);
así mismo, el eucaliptol (1,8-cineol) es
un monoterpeno encontrado también
en Lavandula spica (Lamiaceae), que
presenta actividad insecticida frente
Ceratitis capitata “Mosca mediterránea
de la fruta” (Clemente et al., 2007)
o Trialeurodes vaporariorum “Mosca
blanca” (Choi et al., 2003; García et al.,
2014).
Con respecto a B. graveolens, tiene
secreciones de resinas de monoterpenos
y sesquiterpenos en los tallos como
protección frente al ataque de los
insectos (Aldana et al., 2010). Presenta
como composición química a limoneno
(48,2%) y mirceno (19,8%) como
componentes mayoritarios (Leyva et
al., 2007). El limoneno es reconocido
por diversos autores como una
sustancia con efecto antialimentario,
repelente e insecticida que inhiben el
Toxicidad de los aceites esenciales de Bursera graveolens, Lepechinia meyenii y Myrtus
communis sobre
Chrysoperla asoralis, Chrysoperla externa y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae)
48
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
desarrollo y crecimiento de muchos
insectos, como también actividades
antibacteriana y antimicótica. Muñoz
et al. (2014) menciona al limoneno
como constituyente de plantas
colombianas con efecto insecticida
como Lippia alba (Verbenaceae), Citrus
sinensis (Rutaceae) y Cymbopogon
nardus (Poaceae). El mirceno es un
monoterpeno encontrado en Schinus
molle (Anacardinaceae) que presenta
actividad insecticida (Arias et al.,
2017). Martínez et al. (2014) utiliza a
B. graveolens junto con otros extractos
vegetales frente a ádos de la habichuela
(Aphis craccivora) y logró disminuir más
del 60% de la población de los ádos.
Al evaluar el efecto de contacto residual
del aceite esencial de M. communis
sobre las larvas del primer instar de los
tres controladores biológicos a las cinco
concentraciones entre 0,125% a 2% se
observó efecto un insecticida, excepto para
C. externa a las 24 h, pues el resultado
no dirió signicativamente del control
(p≤0,005). Las larvas de C.
asoralis resultaron
ser más sensibles al aceite esencial, pues
obtuvo valor de CL
50
de
1,29% a las 48 h
de exposición (Tabla 4).
9
Con respecto a B. graveolens, tiene secreciones de resinas de monoterpenos y
sesquiterpenos en los tallos como protección frente al ataque de los insectos (Aldana et al.,
2010). Presenta como composición química a limoneno (48,2%) y mirceno (19,8%) como
componentes mayoritarios (Leyva et al., 2007). El limoneno es reconocido por diversos
autores como una sustancia con efecto antialimentario, repelente e insecticida que inhiben
el desarrollo y crecimiento de muchos insectos, como también actividades antibacteriana y
antimicótica. Muñoz et al. (2014) menciona al limoneno como constituyente de plantas
colombianas con efecto insecticida como Lippia alba (Verbenaceae), Citrus sinensis
(Rutaceae) y Cymbopogon nardus (Poaceae). El mirceno es un monoterpeno encontrado en
Schinus molle (Anacardinaceae) que presenta actividad insecticida (Arias et al., 2017).
Martínez et al. (2014) utiliza a B. graveolens junto con otros extractos vegetales frente a
áfidos de la habichuela (Aphis craccivora) y logró disminuir más del 60% de la población
de los áfidos.
Al evaluar el efecto de contacto residual del aceite esencial de M. communis sobre
las larvas del primer instar de los tres controladores biológicos a las cinco concentraciones
entre 0,125% a 2% se observó efecto un insecticida, excepto para C. externa a las 24 h,
pues el resultado no difirió significativamente del control (p≤0,005). Las larvas de C.
asoralis resultaron ser más sensibles al aceite esencial, pues obtuvo valor de CL
50
de
1,29% a las 48 h de exposición (Tabla 4).
Tabla 4
Efecto de Myrtus communis sobre Chrysoperla externa, Chrysoperla asoralis y Ceraeochrysa
cincta en términos de porcentaje de mortalidad larvaria del primer estadio a 24 h y 48 h de
exposición.
C. externa
C. asoralis
C. cincta
Myrtus communis
Exposición
Concentración
24h
48h
24h
48h
24h
48h
Control
0a
0a
0a
0a
0a
0a
0,125%
10a
17,95ab
2,86ab
18,42ab
7,5ab
15ab
0,25%
7,5a
25,64ab
25,71abc
34,21bc
5ab
20ab
0,5%
7,5a
23,08ab
37,14c
28,95bc
12,5b
25b
1%
12,5a
23,08ab
31,43bc
47,37cd
12,5b
25b
2%
15a
33,33b
34,29c
63,16d
15b
30b
NOEC (%)
2
1
0,25
0,125
0,25
0,25
LOEC (%)
>2
2
0,5
0,25
0,50
0,50
CL50 (% extracto)
>2
>2
>2
1.29
>2
>2
F
1,72
3,52
6,53
14,19
5,4
4,83
Sig
0,18
0,02
0,001
0,000
0,003
0,006
Letras minúsculas iguales en una misma columna representan que no hay diferencia signicativa
entre los valores por la prueba de
Duncan (p≤0,05). NOEC= Concentración sin efecto
observado. LOEC=Concentración mínima con efecto observado. CL
50
=
Concentración Letal
Media. F=Prueba de Fisher. Sig.=Nivel de signicancia.
Tabla 4
Efecto de Myrtus communis sobre Chrysoperla externa, Chrysoperla asoralis y Ceraeochrysa cincta en
términos de porcentaje de mortalidad larvaria del primer estadio a 24 h y 48 h de exposición.
Myrtus communis presentó efecto
tóxico sobre los tres controladores
biológicos utilizados en este ensayo, tanto
para los huevos como para las larvas del
primer instar, esto puede deberse a la
composición química del aceite esencial,
principalmente a los monoterpenos que
se encuentran en el aceite (Zayzafoon et
al., 2011; Tayoub et al., 2012). Khani
& Bassavand (2012) señalaron como
H P - J I - L A - C
49
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
componentes principales a α-pineno
(10,4%), α-terpineol (10,1%), linalool
(9,0%) y 1,8-cineol (7,6%). Rasooli et al.
(2002) menciona al α-pineno (29,4%),
limoneno (21,2%), 1,8-cineol (18%)
y linalool (10,6%) como componentes
mayoritarios. Así mismo, Tuberoso et al.
(2006) mencionan que los principales
compuestos en el aceite esencial de las
hojas de M. communis fueron α-pineno
(30,0%), 1,8-cineol (28,8%) y limoneno
(17,5%). Los monoterpenoides son
típicamente compuestos volátiles y
bastante lipofílicos, que pueden penetrar
rápidamente en los insectos e interferir
con sus funciones siológicas (Lee et
al., 2002) actuando como repelente
o insecticida (Bakkali et al., 2008).
Es posible que el aceite esencial de
M. communis, con sus componentes
monoterpenoides, actúe contra los
insectos como neurotoxinas (Papachristos
& Stamopoulos, 2004; Ayvaz et al.,
2010). Se sugirió que los terpenos
naturales aislados de aceites esenciales
podrían actuar como activadores de los
receptores octopaminérgicos en las larvas
de Trogoderma granarium (Kostyukovsky
et al., 2002).
Las larvas de los tres controladores
biológicos utilizados en este ensayo
presentaron respuestas diferentes frente
a los tres aceites esenciales empleados,
la diferencia de sensibilidad puede
atribuirse principalmente a la resistencia
fenotípica (modicaciones en el sitio
objetivo), la resistencia metabólica
(capacidad de desintoxicar insecticidas)
o la modicación del comportamiento.
Los cambios de comportamiento que
minimizan el contacto entre el insecto y
el insecticida pueden causar un impacto
severo en la ecacia de la aplicación
del insecticida, especialmente si las
características siológicas seleccionan la
resistencia (Martins & Valle, 2012).
Estudios han demostrado que los
aceites esenciales y sus componentes
pueden utilizarse potencialmente como
compuestos alternativos a los fumigantes
sintéticos en uso actual (Shakarami et al.,
2005; Ayvaz et al., 2010, Tayoub et al.,
2012; Khani & Bassavand, 2012; Alegre
et al., 2017a), por lo que los aceites
esenciales manejados en el presente
trabajo podrían convertirse en una
alternativa interesante a las estrategias
convencionales de control químico.
Conclusiones
Los aceites esenciales de B. graveolens
y L. meyenii presentan poco o nulo efecto
sobre las larvas de las tres especies de
crisópidos estudiados; mientras que, el
aceite esencial de M. communis, presenta
efecto larvicida en los controladores
biológicos utilizados. B. graveolens y
L. meyenii, serían factores importantes
para considerar en el MIP, ya que
podría prevenirse su afectación sobre los
controladores biológicos. Además, se
debe ampliar los ensayos en laboratorio
y en campo para vericar que no exista
interferencia entre el uso de los aceites
esenciales sobre el desarrollo y la actividad
de los neurópteros como controladores
biológicos en el MIP.
Toxicidad de los aceites esenciales de Bursera graveolens, Lepechinia meyenii y Myrtus
communis sobre
Chrysoperla asoralis, Chrysoperla externa y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae)
50
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
Referencias
Aldana, L., Salinas, D., Valdés, M.,
Gutiérrez & Valladares, M.
(2010). Evaluación bioinsecticida
de extractos de Bursera copallifera
(D.C.) Bullock y Bursera grandifolia
(Schtdl.) Engl. en gusano cogollero
Spodoptera frugiperda J.E. Smith
(Lepidoptera: Noctuidae).
Polibotánica, 29, 149-158.
Alegre, A., Bonifaz, E., Solange, S. &
Iannacone, J. (2017a). Sensibilidad
de dos biocontroladores
Chrysoperla externa y Chrysoperla
carnea (Neuroptera: Chrysopidae)
frente al extracto acuoso de Ruta
graveolens (Rutacea). e Biologist
(Lima), 15, 173-180.
Alegre, A., Iannacone, J. & Carhuapoma,
M. (2017b). Toxicidad del extracto
acuoso, etanólico y hexánico de
Annona muricata, Minthostachys
mollis, Lupinus mutabilis, y
Chenopodium quinoa sobre
Tetranychus urticae y Chrysoperla
externa. Chilean Journal of
Agriculture and Animal Science, ex
Agro-Ciencia, 33(3), 273-284.
Arias, J., Sila, G., Figueroa, I., Fischer, S.,
Robles, A., Rodríguez, J. & Lagunes,
A. 2017. Actividad insecticida,
repelente y antialimentaria del polvo
y aceite esencial de frutos de Schinus
molle L. para el control de Sitophilus
zeamais (Motschulsky). Chilean
Journal of Agriculture and Animal
Science, ex Agro-Ciencia, 33, 93-104.
Ayvaz, A., Albayrak, S. & Karaborklu,
S. 2008. Sensibilidad a la radiación
gamma de los huevos, larvas y pupas
de la polilla de la comida india
Plodia interpunctella (Hübner)
(Lepidoptera: Pyralidae). Ciencia
de manejo de plagas, 64, 505-512.
Ayvaz, A., Sagdic, O., Karaborklu, S.
& Ozturk, I. 2010. Insecticidal
activity of the essential oils from
dierent plants against three
stored-product insects. Journal of
Insect Science, 10, 21-30.
Bakkali, F., Averbeck, S., Averbeck, D.
& Idaomar, M. (2008). Biological
eects of essential oils- A Review.
Food and Chemical Toxicology, 46,
446-475.
Barrueta, L. O., Martín, V.C., Castellanos,
G.L. & Jiménez, C.R. (2017).
Extracto acuoso de Euphorbia lactea
Haw como alternativa local para
el control de Plutella xylostella L..
Revista Centro Agrícola, 44, 49-55
Berka-Zougali, B., Ferhat, M., Hassani,
A., Chemat, F. & K. Allaf. (2012).
Comparative study of essential
oils extracted from Algerian
Myrtus communis L. leaves using
microwaves and hydrodistillation.
International Journal of Molecular
Sciences, 13(4), 4673-4695.
Bussmann, R. W. & Sharon, D. (2015).
Plantas Medicinales de los Andes
y la Amazonía, la ora mágica y
medicinal del norte del Perú. Centro
William L. Brown – Jardín Botánico
de Missouri, Trujillo, Perú.
Campos, E., De Oliveira, J., Pascoli, M.,
De Lima, R. & Fraceto, L. (2016).
H P - J I - L A - C
51
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
Neem oil and crop protection:
from now to the future. Frontiers
in Plant Science, 7, e1494.
Castillo, R. P. 2004. Estudio químico y de
actividad antioxidante en Lepechinia
meyenii.
Tesis Magister en Química. Pontica
Universidad Católica del Perú,
Lima, Perú.
Celaya, M. H., Anaya, I.J., Barrera,
S.M., Barrales, H.S., Nieblas, L.M.
& Osuna, C.R. (2019). Extractos
hidro-etanólicos de plantas
comestibles como alternativa para
controlar bacterias patógenas,
parásitos e insectos en la industria
pecuaria. Biotecnia Revista de
Ciencias Biológicas y de la Salud,
21, 47-54
Choi, W., Lee, E., Choi, B., Park, H.
& Ahn, Y. (2003). Toxicity of
plant essential oils to Trialeurodes
vaporariorum (Homoptera:
Aleyrodidae). Journal of Economic
Entomology 96, 1479-1484.
Clemente, S., Mareggiani, G., Broussalis,
A. & Ferraro, G. (2007). Actividad
insecticida de 1,8-cineol sobre
mosca de los frutos, Ceratitis capitata
Wied. (Diptera: Tephritidae).
Dominguezia, 23, 29-34.
Cruz G. S., Wanderley-Teixeira, V.,
Oliveira, J.V., Correia, A.A., Breda,
M.O., Alves, T.J., Cunha, F.M.,
Teixeira, A.A., Dutra, K.A. &
Navarro, D.M. (2014). Bioactivity
of Piper hispidinervum (Piperales:
Piperaceae) and Syzygium
aromaticum (Myrtales: Myrtaceae)
oils, with or without formulated Bta
on the biology and immunology of
Spodoptera frugiperda (Lepidoptera:
Noctuidae). Journal of Economic
Entomology, 107, 144-153.
Fusé, C. B., Villaverde, M.L., Padín,
S.B., De Giusto, M. & Juaréz, M.P.
(2013). Evaluación de la actividad
insecticida de tierras de diatomeas
de yacimientos argentinos.
RIA. Revista de Investigaciones
Agropecuarias, 39, 207-213.
García, V., Soto, A. & Bacca, T. (2014).
Efecto insecticida de productos
alternativos en Trialeurodes
vaporariorum (Hemiptera:
Aleyrodidae). Revista Colombiana
de Entomología, 40,143-147.
Gardeli, C., Vassiliki, P., Athanasios,
M., Kibouris, T. & Komatis, M.
(2008). Essential oil composition
of Pistacia lentiscus L. and Myrtus
communis L.: Evaluation of
antioxidant capacity of methanolic
extracts. Food Chemistry, 107,
1120-1130
Gonzáles, O. & Reguillón, C. (2002).
A new species of Chrysoperla
(Neuroptera: Chrysopidae) from
Argentina. Revista de la Sociedad
Entomologica Argentina, 61, 47-50.
González, R., Silva, G., Urbina, A.
& Gerding, M. (2016). Aceite
esencial de Eucalyptus globulus Labil
y Eucalyptus nitens H. Deane &
Maiden (Myrtaceae) para el control
de Sitophilus zeamais Motschulsky.
Chilean Journal of Agricultural &
Animal Sciences (ex Agro-Ciencia),
32, 204-216.
Toxicidad de los aceites esenciales de Bursera graveolens, Lepechinia meyenii y Myrtus
communis sobre
Chrysoperla asoralis, Chrysoperla externa y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae)
52
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
Guzmán, J. (2005). Propagación in vitro de
especies pertenecientes a las familias
Rosaceae (Hesperomeles goudotiana y
Rubus glaucus), Ericaceae (Macleania
rupestris, Vacinium meridionale) y
Cactaceae (Opuntia cus indica).
Informe técnico. Bogotá: Jardín
Botánico José Celestino Mutis.
Iannacone, J. & Lamas, G. (2002).
Efecto de dos extractos botánicos y
un insecticida convencional sobre
el depredador Chrysoperla externa.
Manejo Integrado de Plagas y
Agroecología 65, 92-101.
Iannacone, J. & Lamas, G. (2003).
Efectos toxicológicos de extractos
de molle (Schinus molle) y Lantana
(Lantana camara) sobre Chrysoperla
externa (Neuroptera: Chrysopidae),
Trichogramma pintoi (Hymenoptera:
Trichogram-matidae) y Copidosoma
koehleri (Hymenoptera: Encyrtidae)
en el Perú. Agricultura Técnica, 63,
347-360.
Iannacone, J. & Alvariño, L. (2005).
Selectividad del insecticida
cartap empleando bioensayos
con organismos no destinatarios.
Ecología Aplicada, 4, 91-104.
Iannacone, J. & Alvariño, L. (2010).
Toxicidad de Schinus molle
L. (Anacardiaceae) a cuatro
controladores biológicos de plagas
agrícolas en el Perú. Acta Zoológica
Mexicana, 26, 603-615.
Iannacone, J., Alvariño, L., La Torre,
M.I., Guabloche, A., Ventura, K.,
Chero, J., Cruces, C., Romero, S.,
Tuesta, E., Saez, G., MacDonald,
D., Tueros, G., Argota, G., Fimia,
R. & Carhuapoma, M. (2015). Toxicidad
aguda y crónica de Tagetes elliptica
(Asteraceae) y dimetoato sobre
depredadores y parasitoides de plagas
de importancia agrícola en Perú. e
Biologist (Lima), 13, 329-347.
Khani, A. & Basavand, F. (2012).
Chemical composition and
insecticidal activity of myrtle
(Myrtus communis L.) essential oil
against two stored-product pests.
Journal of Medicinal Plants and
By-products, 2, 83-89.
Kostyukovsky, M., Rafaeli, A., Gileadi,
C., Demchenko, N. & Shaaya, E.
(2002). Activation of octopaminergic
receptors by essential oil constituents
isolated from aromatic plants:
possible mode of action against insect
pests. Pest Management Science 58,
1101–1106.
Lee, S., Peterson, C. & Coats, J.
(2002). Fumigation toxicity of
monoterpenoids to sever al stored
product insects. Journal of Stored
Products Research, 39, 77–85.
Leyva, M., Martínez, J. & Stashenko, E.
(2007). Composición química del
aceite esencial de hojas y tallos de
Bursera graveolens (Burseraceae) de
Colombia. Scientia et Technica,
33, 201-202.
Leyva, M., Tacoronte, J., Marqueti, M.,
Scull, R., Tiomno, O., Mesa, A. &
Montada, D. (2009). Utilización
de aceites esenciales de pinaceas
endémicas como una alternancia en
el control del Aedes aegypti. Revista
Cubana de Medicina Tropical, 61,
239-243.
H P - J I - L A - C
53
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
Martínez, Y., Castellanos, L. & Ortega,
I. (2014). Efecto insecticida de
extractos de plantas para el control
de ádo de la habichuela en la
Empresa Azucarera Elpidio Gómez.
Agroecosistemas, 2, 208-214.
Martins, A. & Valle, D. (2012). e
Pyrethroid Knockdown Resistance.
En: Soloneski, S. & Larramendy, M.
(eds.) Insecticides-Basic and Other
Applications. InTech Publication,
pp. 17-38.
Medina, P., Budia, F., Del Estal, P. &
Viñuela, E. (2004). Inuence
of azadirachtin, a botanical
insecticide, on Chrysoperla carnea
(Stephens) reproduction: toxicity
and ultrastructural approach.
Journal of Economic Entomology,
97, 43-50.
Motazedian, N., Ravan, S. & Bandani,
A. (2012). Toxicity and repellency
eects of three essential oils
against Tetranychus urticae Koch
(Acari: Tetranychidae). Journal
of Agricultural Science and
Technology, 14, 275-284.
Moura, P., Carvalho, A. & Botton, M.
(2012). Residual eect of pesticides
used in integrated apple production
on Chrysoperla externa (Hagen)
(Neuroptera: Chrysopidae) larvae.
Chilean Journal of Agricultural
Research, 72, 217.
Muñoz, J., Staschenko, E. & Ocampo,
O. 2014. Actividad insecticida de
aceites esenciales de plantas nativas
contra Aedes aegypti (Diptera:
Culicidae). Revista Colombiana de
Entomología, 40, 198-202.
Núñez, Z.E. (1988). Ciclo biológico y
crianza de Chrysoperla externa y
Ceraeochrysa cincta (Neuroptera:
Chrysopidae). Revista Peruana de
Entomología, 31, 76-82.
Papachristos, D. & Stamopoulos, D.
(2004). Fumigant toxicity of
three essential oils on the eggs
of Acanthoscelides obtectus (Say)
(Coleoptera: Bruchidae). Journal
of Stored Products Research, 40,
517–525.
Parolín, P., Bresch, C. & Poncet, C. (2015).
Biocontrol plants and functional
diversity in biological control of the
red spider mite Tetranychus urticae:
A review. International Journal of
Agricultural Policy and Research,
3, 198-212.
Quispe, S.M. & Tenorio, R.E. (2018).
Determinación toquímica y
actividad antimicrobiana del aceite
esencial de los órganos aéreos
de Lepechinia meyenii (Walp.)
Epling “pacha salvia”. Tesis para
título profesional de químico
farmacéutico. Universidad Wiener,
Lima, Perú.
Ramírez, D.M., López, A.I., González,
H.A. & Badii, Z.M. (2007).
Rasgos biológicos y poblacionales
del depredador Cereaeochrysa sp.
nr. cincta (México) (Neuroptera:
Chrysopidae). Acta Zoológica
Mexicana, 23, 79-95.
Ramírez, J., Gómez, M., Cotes, J.
& Ñústez, C. (2010). Efecto
insecticida de los aceites esenciales
de algunas lamiáceas sobre Tecia
solanivora Povolny en condiciones
Toxicidad de los aceites esenciales de Bursera graveolens, Lepechinia meyenii y Myrtus
communis sobre
Chrysoperla asoralis, Chrysoperla externa y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae)
54
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
de laboratorio. Agronomía
Colombiana, 28, 255-263.
Rasooli, I., Moosavi, M., Rezaee, M. &
Jaimand, K. (2002). Susceptibility
of microorganisms to Myrtus
communis L. essential oil and its
chemical composition. Journal
of Agricultural Science and
Technology, 4, 127-133.
Rossi, C., Arias, G. & Lozano, N.
(2002). Evaluación antimicrobiana
y toquímica de Lepechinia
meyenii (Walp.) “Salvia”. Instituto
de Investigación en Ciencias
Farmacéuticas y Recursos Naturales.
Farmacia, Lima. Ciencia e
investigación 5, Recuperado en
http://www.sisbib.unmsm.edu.pe/
BvRevistas/ciencia/vol_5N1_2002/
evaluaci%C3% B3n_antimicro biana.
htm (Consultado 20 mayo 2019)
Ruiz, C., Díaz, C. & R. Rojas, R. (2015).
Composición química de aceites
esenciales de 10 plantas aromáticas
peruanas. Revista de la Sociedad
Química del Perú, 81(2), 81-94.
Sariol, S.D., Aponte, R.D. & Hernández,
M.L. (2019). Análisis toquímico
y actividad insecticida in vitro
de extracto acuoso de Agdestis
clematidea en el manejo de Myzus
Persicae. Roca, 15, 28-38.
Sarwar, M. (2015). e killer chemicals for
control of agriculture insect pests: the
botanical insecticides. International
Journal of Chemical and Biomolecular
Science, 1, 123-128.
Satrani, B., Farah, A. & Talbi, M. (2006).
Fractionnal distillation eect on
the chemical composition and
antimicrobial activity of Moroccan
Myrtle (Myrtus communis L.). Acta
Botanica Gallica, 153, 235-242.
Shakarami, J., Kamali, K. &
Moharramipour, S. (2005).
Fumigant toxicity and repellency
eect of essential oil of Salvia
bracteata on four species of
warehouse pests. Journal of the
Entomological Research Society,
Iran, 24, 35-50.
Silva, A., Andrade, G., Freire, C. &
Bastos, D.. (2012). Eects of
pesticides on eggs of Chrysoperla
externa (Neuroptera: Chrysopidae)
and consequences on subsequent
development. Revista Colombiana
de Entomología, 38, 58-63.
Souza, A. P., Marqués, M.R., Mahmoud,
T.S., Caputo, B.A., Canhete,
G.M., Leite, C.B. & De Lima, D.P.
(2008). Bioprospecting insecticidal
compounds from plants native to
Mato Grosso do Sul, Brazil. Acta
Botanica, 22, 1136-1140.
Tarqui, J. (2007). Efecto de tres
bioplaguicidas para el control del
pulgón (Aphis sp.) en el cultivo de
lechuga en ambientes protegidos
en la ciudad de El Alto. Trabajo de
Diploma en opinión al título de
Ingeniero agrónomo. Universidad
Mayor de San Andrés, Bolivia.
Tayoub, G., Abu, A. & Ghanem, I.
(2012). Fumigant activity of leaf
essential oil from Myrtus communis
L. against the Khapra beetle.
International Journal of Medicinal
and Aromatic Plants, 2, 207-213.
H P - J I - L A - C
55
| C | V. XXV | N. 29 | - | 2020 | | ISSN (): - | ISSN ( ): - |
Tuberoso, C., Barra, A., Angioni, A.,
Sarritzu, E. & Pirisi, F. (2006).
Chemical composition of volatiles
in Sardinian myrtle (M. communis
L.) alcoholic extracts and essential
oils. Journal of Agricultural and
Food Chemistry, 54, 1420-1426.
Unión Internacional para la Conservación
de la Naturaleza (UICN). (2019).
UICN - Especies para Restauración.
Disponible en http://www.
especiesrestauracion-uicn.org/data_
especie.php?sp_name=Bursera%20
graveolens. (Consultado el
16 mayo 2019)
Valdiviezo, C.E. (2019). Actividad
biocida del aceite esencial y extractos
vegetales de Eucalyptus globulus L. y
Artemisia absinthium L. obtenidos
de la región La Libertad sobre
adultos de Aedes aegypti. Tesis de
Maestría, Universidad Nacional de
Trujillo, Trujillo, Perú.
Weber, I. C. (1993). Methods for measuring
the acute toxicity of euents and
receiving waters to freshwater and
marine organisms. EPA/600/4-
90/027F. 310Zayzafoon, G., Odeh,
A. & Allaf, W. (2011). e use of
photochemiluminescence assay
for the measurement of integral
antioxidant capacity in Syrian
Myrtus comminus L. leaves. Herba
Polonica, 57, 5-19.
Toxicidad de los aceites esenciales de Bursera graveolens, Lepechinia meyenii y Myrtus
communis sobre
Chrysoperla asoralis, Chrysoperla externa y Ceraeochrysa cincta (Neuroptera: Chrysopidae)
