CALLOS EMBRIOGÉNICOS Y PROEMBRIONES INDUCIDOS EN COTILEDONES DE Pouteria lucuma, var. “seda”, UTILIZANDO REGULADORES DEL CRECIMIENTO
Keywords:
callo embriogénico, embriogénesis somática, lúcuma, auxinas, citoquininasAbstract
El lúcumo es un cultivo de interés por su consumo humano y su aplicación industrial, pero hay problemas en su productividad debido a su variabilidad genética. Los cultivos in vitro, en especial la embriogénesis somática, puede ayudar a su mejoramiento, pero primero debemos conocer la competencia del explante. Con lo expuesto se tuvo como objetivo inducir callos embriogénicos y proembriones a partir de cotiledones, maduros e inmaduros, de Pouteria lúcuma “lúcuma”. Para ello se utilizó el medio de cultivo de Murashige & Skoog suplementado con diferentes combinaciones de benciladenina purina, ácido naftalén acético y 2,4-diclorofenoxiacético. Los resultados muestran que los cotiledones inmaduros forman pro-embriones a los 63 días en T6 y 95 días en T7 (5 ppm BAP y 3 ppm de 2,4-D) y en los cotiledones maduros sólo se observaron callos embriogénicos a los 58 días en T7. Se concluye que los cotiledones inmaduros es el explante que muestra mejores respuestas en la formación de callos embriogénicos y pro-embriones.
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References
Carneros, E., Celestino, C., Klimaszewska, K., Park, Y., Toribio, M. & Bonga, J. (2009). Plant regeneration in Stone pine (Pinus pinea L.) by somatic embryogenesis. Plant Cell Tiss Organ Cult 98: 165 – 178.
Cordero, L. (2006). Comportamiento de hormonas vegetales en la mira de investigadores. Crisol Revista de Ciencia y Tecnología de la UCR. N° 16
Córdova-Risco, J., Rojas-Idrogo, C. & Delgado-Paredes, G. (2017). In vitro micrografting of lucumo (Pouteria lucuma), Sapotaceae. Environmental and Experimental Biology 15: 217–224
Czernicka, M., Iwona, C., Kinga, K., Kozieradzka‑Kiszkurno, M.,Abdullah, M. & Popielarska‑Konieczna, M. (2021). Protuberances are organized distinct regions of long‑term callus: histological and transcriptomic analyses in kiwifruit. Plant Cell Reports (2021) 40:637–665
Chen, J., Tong, C., Lin, H. & Fang, S. (2019). Phalaenopsis LEAFYCOTYLEDON1— induced somatic embryonic structures are morphologically distinct from protocorm-like bodies. Front Plant Sci 10:1594.
Chugh, A. & Khurana, P. (2002). Gene expression during somatic embryogenesis– recent advances. Curr. Sci. 83(6): 715-729.
Da Silva, G., A. Da Cruz, W., Otoni, T., Pereira, D., Rocha, C. & Da Silva M. (2015). Histochemical evaluation of induction of somatic embryogenesis in Passiflora edulis Sims (Passifloraceae). Vitro Cell Dev Biol Plant 51:539–545
Fareed M., Shahzad, M., Nauman, M., Tabassum, B., Tariq, M., Murtaza, S., Ali, S., Raza, A., Raza, S. & Ahamd I.. (2019). Evaluation of genotypic and hormone-mediated callus induction and regeneration in sugarcane (Saccharum officinarum L). International Journal of Botany Studies. 4(6): 70-76
Feher, A. (2019). Callus, dedifferentiation, totipotency, somatic embryogenesis: what these terms mean in the era of molecular plant biology? Front Plant Sci 10:536.
Feher, A. (2008). The initiation phase of somatic embryogenesis: what we know and what we don’t. Acta Biol. Szegediensis, 52(1): 53-56.
Franciosi, R. (1995). El cultivo del lúcumo en el Perú. Fundeagro, Lima. 86 p.
Ghorbani-Marghashi M., Gholami, M., Maadankan, R. & Jamshidi H. (2012). The study of 2,4-D and 2,4,5-T effects on gene expression at early stages of embryogenesis in chickpea (Cicer arientinum L.). African Journal of Biotechnology 11(12):2889-2903
Jordan, M., Valenzuela, M. & Velozo, J. (1994). Androgenic responses in the in vitro cultured anthers of Pouteria lucuma (R. et Pav.) O. Kze. Ciencia-e-Investigacion-Agraria 21(1-2):53-58.
Jordan, M.& Oyanedel, E. (1992). Regeneration of Pouteria lucuma (Sapotaceae) plants in vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 31: 249-252
Lee, J. & Pijut, P., (2017), Adventitious shoot regeneration from in vitro leaf explants of Fraxinus nigra. Plant Cell Tiss Organ Cult 130:335–343.
Malca, O. (2000). Seminario de Agro negocios. Universidad del Pacífico, Facultad de Administración y Contabilidad. https://docplayer.es/6657195-Lucuma-seminario-de-agro-negocios-abril-2000-profesor-oscar-malca-g-omalca-up-edu-pe-integrates-paola-marin-ugarte-kathy-zaragoza-ramos.html
Martínez, R., Azpiroz, H., Rodríguez, L., Gutiérrez, M. & Cetina, V. (2010). Embriogénesis somática in vitro en 2 especies de Eucalipto (Eucalyptus grandis y E. urophylla). En Biotecnologia Aplicada a los Recursos Forestales. Serie Forestal. México: 155-176
Maza-De la Quintana, R. & Paucar-Menacho, L. (2020). Lúcuma (Pouteria lucuma): Composición, componentes bioactivos, actividad antioxidante, usos y propiedades beneficiosas para la salud. Scientia Agropecuaria 11(1): 135-142.
file:///C:/Users/JULIO/Downloads/Lucuma_Pouteria_lucuma_Composition_bioactive_compo.pdf
Mondal, T., Parathiray, S. & Mohan, P. (2005). Micrografting: A technique to shorten the hardening time of micropropagated shoots of tea (Camellia sinensis (L.) O. Kuntze). Sri Lanka J. Tea Sci. 70: 5–9.
Murashige, T., Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 437–497.
Naz, M., Sughar, G., Soomro, Z., Ahmed, I., Seema, N., Nizamani, G., Saboohi, M. & Nizamani R. (2017). Somatic embryogenesis and callus formation in sugarcane(Saccharum SPP L.) using different concentration of 2,4-D and RAPD analysis of plants regenerates. -IndianJournal of Agricultural Research. 2017; 51:93-102.
Niazian, M., Shariatpanahi, M., Abdipour, M. & Oroojloo M, (2019) Modeling callus induction and regeneration in an anther culture of tomato (Lycopersicon esculentum L.) using image processing and artificial neural network method. Protoplasma 256:1317–1332.
Nugent, G., Chandler, S., Whiteman, P. & Stevenson, T. (2001). Somatic Embryogenesis in Eucaliptus globulus. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 67: 85 – 88.
Padilla, I., Carmona, E., Westendorp, N.& Encina, C. (2006). Micropropagation and effects of mycorrhiza and soil bacteria on acclimatization and development of lucumo (Pouteria lucuma R and Pav.) var. la Molina, in vitro Cellular & Developmental Biology – Plant. 42: 193 – 196.
Quijano, C. & Prieto, Z. (2020). Variabilidad Genética en Pouteria lucuma mediante marcadores ISSR. Manglar 17(1): 7-12
Quiroz-Figueroa, F., Fuentes-Cerda, C., Rojas-Herrera, R. & Loyola-Vargas, V. (2002). Histological studies on the developmental stages and differentiation of two different somatic embryogenesis system of Coffea arabica. Plant Cell 20: 1141-1149.
Roca, A. & Mroginski, F. (1990). Cultivo de tejidos en la Agricultura. Fundamentos y Aplicaciones. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). Colombia. http://ciat-library.ciat.cgiar.org/Articulos_Ciat/biblioteca/Cultivo_de_tejidos_en_la_agricultura.pdf
Serrano, M. & Piñol, M. (1991). Biotecnología Vegetal. Editorial Síntesis. España
Silva, J., Montes, S., Acosta, L., Arias, E., & García. A. (2005). Embriogénesis somática: Una alternativa para la propagación, mejoramiento y conservación de germoplasma en cacao. Cuaderno de Biodiversidad Nº 16: 9-12.
Thrope, T. (1995). In vitro somatic embryogenesis in plants. Kluver Acadamic Publishers, Dordrecht. p. 557.
Tripathi, M., Tiwari, S., Tripathi, N., Tiwari, G., Bhatt, D., Vibhute, M., Gupta, N., Mishra, N., Parihar. P., Sing, P., Sharma, A., Ahuja, A. & Tiwari S. (2021). Plant Tissue Culture Techniques for Conservation of Biodiversity of Some Plants Appropriate for Propagation in Degraded and Temperate Areas. In Current Topics in Agricultural Sciences 4: 30-60
Vengadesan, G. & Pijut, P. (2009). Somatic embryogenesis and plant regeneration of northern red oak (Quercus rubra L.). Plant Cell Tiss Organ Cult 97: 141-149.
Vidales-Fernández, R., Slagado-Garciglia, M., Gómez-Lim, E., Ángel-Palomares, B. & Guillén-Andrade, H.. (2003). Embriogénesis Somática de “aguacate” (Persea americana Mill. CV. Hass).Actas V Congreso Mundial del Aguacate. México
Wang, W., Zhao, X., & Zhuang, G. (2008). Simple hormonal regulation of somatic embryogenesis and/or shoot organogénesis in caryopsis cultures of Pogonatherum paniceum (Poaceae). Plant Cell Tiss Organ Cult 95:57-67.
file:///C:/Users/JULIO/Downloads/Simplehormonalregulationofhighefficiencysomaticembryogenesisand.pdf
Yahia, M. & Gutiérrez-Orozco, F. (2011). Lucuma (Pouteria lucuma (Ruiz and Pav) Kuntze). En E. M. Yahia. Postharvest biology and technology of tropical and subtropical fruits 3: 443-449.
file:///C:/Users/JULIO/Downloads/Lucuma_Pouteria_lucuma_Ruiz_Pav_Kuntze.pdf
Yu, X., Hua, Y., Cheng, Z. & Sheng, X. (2008). Cell Fate Switch during In Vitro plant Organogenesis. Journal of integrative Plant Biology, 50 (7): 816-824.
file:///C:/Users/JULIO/Downloads/Cell_Fate_Switch_during_in_vitro_Plant_O.pdf